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一、準備和安裝過濾器 

清洗好過濾器，放入一張孔徑0.22μm的微孔濾膜，用布包好，用15磅20min進行高壓滅菌處理。在超凈臺內打開并將過濾器架好，膠管一端接入濾泵再插入待除菌的液體中，出口端膠管深入到已消毒好的瓶子中，用泵過濾后檢查濾膜是否完好。 

二、合成培養(yǎng)基的配制：

1.根據(jù)細胞目錄中的說明，按表選擇合適品牌及貨號的培養(yǎng)基干粉，用適量超純水充分溶解。

2.按要求添加tan酸氫鈉、gu氨酸鈉等，充分攪拌使之溶解。

3.pH調至7.2左右。

4.加水至zui終體積。

5.在超凈臺中對溶液進行濾過除菌，分別裝入250mL或500mL玻璃瓶中，用翻帽塞塞緊瓶口。

6.瓶口封存好，放入4℃的冰箱進行貯存。 

三、小牛血清的處理 

1.將血清加熱至56℃并保持30 min，其間要不時輕輕晃動，使受熱均勻，防止沉淀析出。

2.處理后的血清貯存于4℃。

3.小牛血清在使用前進行篩選以掌握血清的質量。

四、生長培養(yǎng)基的配制 

1.除了無血清培養(yǎng)之外，各種合成的培養(yǎng)基在使用之前都需要加入一定量的小牛血清或胎牛血清和抗菌素。 

2.培養(yǎng)基分裝成小瓶（100～200 mL）以便使用，翻帽塞塞緊瓶口。 

比例配制：基本培養(yǎng)基占80％--90％，小牛血清或胎牛血清占10％--20％。按1％的體積分數(shù)加入雙抗貯存液（qing霉素+lian霉素），使qing霉素和llian霉素的終濃度分別為100U／mL和100μ／mL，。 

五、凍存細胞的復蘇 

1.應遵循慢凍快融的原則。先將水浴鍋調至37-37.5°，取出凍存的細胞迅速放入后將細胞面浸至水面以下不斷搖動至融化。 

2.在無菌臺內將培養(yǎng)基加入到50ml的小培養(yǎng)瓶內，約5ml左右，然后用無菌吸管從凍存管內取出細胞，置培養(yǎng)并內輕輕搖晃，使細胞均勻后置培養(yǎng)箱內培養(yǎng)。

六、傳代 貼壁細胞:

對于貼壁細胞應先吸/倒 進培養(yǎng)基，吸干凈，以免中和后加入的消化液使強度減弱。50ml培養(yǎng)瓶加入消化液約1-3ml，晃動使消化液鋪均勻置37°培養(yǎng)箱約2-5分鐘，鏡下見細胞收縮變圓或少數(shù)脫落后，輕輕振動瓶底使細胞全部脫落，加入2-3ml培養(yǎng)基后，輕輕吹打，使細胞基本成單個懸浮，然后分置其它無菌培養(yǎng)瓶內，加入培養(yǎng)基后繼續(xù)培養(yǎng)或實驗。 

七、凍存 

將貼壁細胞消化后離心收集，懸浮細胞直接離心收集，以培養(yǎng)基或胎牛血清重懸細胞至終濃度約106ml。加入10%的DMSO。以每管1-2ml分裝至凍存管中。用絕熱材料包裹置-70°C的冰箱冷凍。次日保存到液氮中。 

八、注意事項

玻璃吸管和玻璃培養(yǎng)瓶的消毒:

1）高壓蒸汽滅菌15分鐘以上;

2）干烤消毒140度2小時以上; 

3）無菌工作臺先清洗后用75%酒精擦拭干凈，紫外線照射40分鐘以上;

4）各種培養(yǎng)板照射3小時以上; 

培養(yǎng)基（pH7.2）和血清配制好后要做無菌試驗:

1.將血清按10%加入培養(yǎng)基內，用無菌的玻璃離心管或玻璃瓶取培養(yǎng)基5-10ml置培養(yǎng)箱內培養(yǎng)2-3天，肉眼見無渾濁或沉淀等異物。分裝后置4度保存; 

2.消化液（pH7.8）或其它加入液，應用高壓蒸汽滅菌或一次性無菌濾器過濾除菌，分裝成支置-20度保存;

3.培養(yǎng)箱應先用清水清洗后用75%酒精擦拭一遍（如有紫外線的應照射1小時以上，如有高溫滅菌的應按程序來菌）。至少每月一次。 

進入操作時應注意先清洗雙手及手腕，然后用75%酒精擦拭，操作時注意無菌臺內空間層次。手及物品不要在暴露的瓶口上方，如果數(shù)量較多，培養(yǎng)瓶應放在與酒精燈平行地方便于操作，瓶與瓶之間應相隔一定的距離，開瓶時應先用75%酒精反復擦拭或用燈燒，打開后先用燈先燒口，再燒蓋。用完后同樣操作。整個操作過程需靠無菌臺近點。